Review Article

농장 동물 유래 장 오가노이드의 활용

이요한https://orcid.org/0009-0009-1231-1969, 이상인*https://orcid.org/0009-0007-8971-3400
John Leehttps://orcid.org/0009-0009-1231-1969, Sang In Lee*https://orcid.org/0009-0007-8971-3400
Author Information & Copyright
경북대학교 축산BT학과
Department of Animal Science and Biotechnology, Kyungpook National University, Sangju 37224, Korea
*Corresponding author: Sang In Lee, Department of Animal Science and Biotechnology, Kyungpook National University, Sangju 37224, Korea, Tel: +82-54-530-1943, E-mail: silee78@knu.ac.kr

© Copyright 2023 Korean Society of Animal Science and Technology. This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

Received: Oct 01, 2023; Revised: Oct 15, 2023; Accepted: Oct 30, 2023

Published Online: Dec 31, 2023

Abstract

In livestock species, the small intestine plays a crucial role as the site for food digestion and nutrient absorption, and these functions are carried out by the epithelial cells forming a single layer on the surface of the intestine. Research on these animals has been essential to improve their health and productivity, and to achieve this, immortalized cell lines and primary cell cultures have been employed as in vitro models. However, these models had limitations as they could not completely replicate the functionality of real tissues. Recently, methods for culturing intestinal organoids from various livestock species, including pigs, cattle, chickens, rabbits, and horses, have been developed. Intestinal organoids address several drawbacks associated with traditional in vitro models, opening up new possibilities for studying intestinal epithelia. This paper explores the development of intestinal organoids in various livestock species and the research based on these models.

Keywords: Intestine; Organoid; Farm animal

서 론

동물의 장은 크게 소장, 대장, 직장으로 이루어져 있으며, 음식의 소화 및 영양분 흡수는 주로 소장에서 일어난다. 소장은 다시 십이지장과 공장, 회장으로 구성되어 있으며, 먹이를 소화하고 소화한 영양분을 흡수하는 기능과 인체에 해로운 물질들(세균, 기생충, 독소)을 체내로 침투하지 못하게 막는 기능을 가지고 있다. 이러한 장의 기능들은 장의 표면에서 단일 층을 이루는 장 상피세포들에 의해 나타난다[1]. 장 상피세포에는 흡수 세포인 장 세포(영양분 흡수)와 분비세포인 장내 분비 세포(호르몬 분비), 잔 세포(점액 분비), 술 세포(항 기생충 면역), 파네스 세포(항균 펩타이드 분비)가 있으며, 이 세포들은 모두 장 선와 바닥에 존재하는 장 상피 줄기세포에서 유래한다[2]. 파네스 세포를 제외한 줄기세포에서 분화된 장 상피세포들은 내강을 향해 이동하여 융모를 구성하며, 파네스 세포는 선와에 남아 줄기세포의 분화를 돕는 역할을 한다[3]. 최근 연구에 따르면 일부 조류 종의 경우, 파네스 세포가 융모에서 발견되거나 존재하지 않는다고 한다[4]. 가축의 장 상피에 대한 연구는 곧 가축 사료 효율 및 증체량에 직결되기 때문에 굉장히 중요하다. 그동안 가축들의 장 상피에 대해 연구하기 위해 돼지의 intestinal porcine epithelial cell lines(IPEC-J2)과 같은 불멸화 세포주나 장 조직에서 갓 얻은 세포를 바로 배양하는 일차 세포 배양법을 사용했지만, 세포주의 경우 불멸화를 위해 돌연변이를 일으킨 세포이기 때문에 실제 조직의 기능을 완전히 재현하지 못하며[5], 일차 세포는 세포주보다 실제 조직의 특징을 잘 나타내지만, 배양 과정이 복잡하고, 3–5일이면 탈각이 일어나는 장 상피의 특성상 장기 실험이 불가능하다. 최근 이러한 실험적 한계를 가축 장 오가노이드 개발을 통해 극복했다.

오가노이드란 생체 외 실험에서 장기의 구조 및 기능을 최대한 비슷하게 구현하기 위해 설계된 3차원 형태의 구조체이다[6]. 장 오가노이드는 실제 장과 같이 단층의 장 상피세포들이 빈 공간인 내강을 형성하고, 융모와 선와 구조가 생성되며, 장의 주요 기능인 영양분 흡수 및 장 장벽의 기능을 재현할 수 있다. 장 오가노이드의 배양 시스템은 Lgr5 + 장 상피 줄기세포의 분화와 관련된 신호 전달 경로가 밝혀진 후 인간과 쥐에서 처음 개발되었다[7]. 오가노이드가 개발되기 전 사용한 생체 외 모델인 불멸화 세포주 배양과 일차 세포 배양법은 여러 종의 동물들에게 적용할 수 없었기 때문에 장에 대한 생체 외 실험에 어려움이 있었다. 그러나 최근 여러 동물의 장 오가노이드가 개발되었고, 현재 다양한 연구들이 진행되고 있다.

특히 농장 동물들의 장 오가노이드가 개발됨에 따라 가축 종의 장 상피에 대한 다양한 연구가 진행되고 있다. 이러한 연구를 통해 가축의 소화기 질병, 영양 흡수 문제 등 건강 문제에 대응할 수 있고, 소화기 기능 및 면역 시스템의 이해를 높여 적절한 사료 및 영양 공급을 통해 가축 생산성을 높일 수 있으며, 이는 결국 생산성 향상 등 축산 산업 전반에 긍정적인 영향을 끼칠 수 있다.

이 논문은 가축 산업에서 주요한 동물인 돼지, 닭, 소를 비롯해 여러 가축 동물에서 유래한 장 오가노이드의 발전과 이를 활용한 연구를 살펴본다.

돼지 장 오가노이드

돼지의 경우, 그동안 IPEC-J2라는 불멸화 세포주를 이용해 장 장벽 기능과 영양분의 수송을 측정하고, 여러 곰팡이 독소가 미치는 영향, 다양한 미생물 및 병균과의 상호작용 등 많은 연구가 이루어졌다[810]. 그러나 이 세포주에는 MUC2를 제어하는 유전자의 발현이 부족해 실제 돼지의 장 환경을 완전히 대변하지 않다는 것이 확인되었기 때문에, 가축 장 연구에 더 적합한 생체 외 모델의 필요성이 커지게 되었다[5].

돼지 장 오가노이드는 2013년 Gonzalez et al.[11]이 돼지의 공장 조직에서 처음 개발되었으며, 이후 다른 장 조직에서 추출한 오가노이드가 확립되었다[11,12]. 또한 냉동보존된 조직에서의 장 오가노이드 배양법과 장 오가노이드의 2D 배양법 등 여러 기술들이 개발되었으며, 현재 다양한 연구의 생체 외 모델로 사용되고 있다[13].

장내 숙주-병원체의 상호작용 연구를 위한 돼지 장 오가노이드의 활용

돼지 농가에서는 현재 많은 돼지 소화기 질병에 의해 고통을 받고 있다. 이 질병들의 여러 메커니즘을 파악하기 위해 장 오가노이드를 활용한 많은 연구가 진행되었다. 예를 들어 먼저 바이러스에 대해서 돼지 유행성 설사의 병원체인 돼지 유행성 설사병 바이러스가 다양한 장 오가노이드에 감염되고, 감염 초기에 인터페론의 생산을 억제하며, 결장보다 회장을 먼저 감염시키는 것을 확인했다[14]. 그리고 돼지 델타 코로나 바이러스(PDCoV)가 Notch 신호 전달 경로를 활성화해 술잔 세포의 수와 MUC2의 발현을 크게 감소시키고, 장 장벽을 파괴하는 것을 알아냈다[15]. 또한, 돼지 전염성 위장염 바이러스는 Wnt/β-catenin 경로를 활성화해 소장 상피 줄기세포의 자기 재생을 촉발한다는 것을 밝혔다[16]. 앞선 돼지 코로나바이러스들의 생체 외 연구를 위해 오가노이드 장기 배양 시스템을 개발하기도 했다[17]. 그 외에도 돼지 장 오가노이드가 다른 바이러스를 연구하기에 유망한 모델이라는 것을 확인했다[18].

장 오가노이드는 바이러스 연구뿐만 아니라 박테리아 및 진균 연구에도 활용되었다. 예를 들어 가축에서 흔히 발생하는 병균인 살모넬라종을 장 오가노이드에 감염시킬 수 있다는 것이 확인됐다[19]. 다른 예로 대표적인 장내 병원균인 대장균이 분비하는 독소에 대한 연구도 진행되었는데, 장독소에 노출된 장 오가노이드에서 부종이 발생하고 인터루킨 8 분비가 상향 조절되는 것을 확인했다[20]. 이는 실제 소장 상피에서 발생하는 반응과 유사하다. 또한, 콜레라독소에 대한 생리학적 반응 연구에 유용하다는 것이 입증되었으며, 대표적인 곰팡이 독소인 데옥시니발레놀이 Wnt/β-catenin 신호전달 경로를 하향 조절해 장내 환경을 파괴하는 것을 장 오가노이드를 통해 최초로 확인했다[21,22]. 마지막으로 돼지 장 오가노이드를 활용한 숙주와 기생충의 상호작용에 대한 연구는 아직 초기 단계이지만 Toxoplasma gondii가 성공적으로 감염되는 것을 확인했으며, 이는 기생충 연구에 충분한 가능성이 있다는 것을 보여준다[19].

그 외 돼지 장 오가노이드의 활용

돼지 장 오가노이드는 장 영양에 대한 연구에 활용할 수 있다. 이것을 통해 이유자돈의 이유 스트레스 완화를 위해 보충하는 물질인 비타민 A가 장 줄기세포를 조절해 장 기능에 영향을 미치는 것을 보여줬으며, L-글루타메이트를 처리했을 때 줄기세포의 활동을 증가시켜 장 상피의 재생을 유도하는 것을 확인했다[23,24]. 그리고 필수 미네랄 중 하나인 아연이 돼지 장에 미치는 영향을 일부 확인할 수 있었다[25].

또한, 실제 조직과 비슷하다는 오가노이드의 특징을 이용해 약물 실험에 사용할 수 있다. 사람에게 직접 임상실험을 하는 것에 비해 많은 장점을 가지고 있으며, 실제로 이미 인간 오가노이드를 이용해 많은 약물 실험이 이루어졌다. 하지만 인간 오가노이드 사용에는 여전히 여러 단점이 남아있으며 이를 극복하기 위해 인간과 생리학적, 해부학적으로 유사한 돼지의 오가노이드를 약물 연구에 활용하는 방안이 제시됐다. 아직 이 기술은 초기 단계이지만, 실제로 돼지 결장 오가노이드가 인간 결장과 비슷한 약물 반응을 보이는 것을 확인했으며 이는 앞으로 돼지 오가노이드가 약물 연구에 큰 도움이 될 것이라는 방증이다[21].

닭 장 오가노이드

포유류 종의 경우, 장 상피에서 유래한 여러 불멸화 세포주를 보유하고 있으며, 이를 활용한 여러 생체 외 연구가 이루어졌다. 하지만 닭의 경우 최근까지 장 상피 세포주가 존재하지 않았으며, 현재 개발된 세포주는 여전히 검증이 필요하다[26]. 일차 세포 배양법의 경우 성공적으로 확립되었으며 최근 연구에선 19일 된 닭 배아에서 분리한 세포를 배양하여 12일까지 유지되며 transepithelial electrical resistance(TEER) 측정이 가능한 배양법이 개발되었다[27]. 그러나 이것 역시 세포주에 비해 짧은 배양시간으로 인해 장기 실험에 어려운 점이 있다.

이러한 한계를 극복하기 위해 닭 배아의 소장 선와에서 유래한 장 오가노이드가 Pierzchalska et al.에 의해 개발되었으며, 이후 오가노이드 배양에 대한 여러 연구가 진행되었다[28]. 예를 들어 개발 이후 성체 닭에서 유래한 장 오가노이드의 배양이 성공하였으며, 이후 R-spondin, Noggin, epidermal growth factor(EGF)와 프로스타글란딘 E2를 함께 사용하는 프로토콜이 확립되었다[29]. 다른 방식의 배양법도 연구되었다. 한 연구에서는 배양에 사용되는 Matrigel의 사용량을 줄이고 현적배양을 통해 오가노이드 배양이 가능하다는 것을 보여주었으며, 다양한 성장인자가 없는 기본 배양 배지에 오가노이드를 배양하는 것도 가능하다는 것을 보여주었다[30,31]. 또한 기존의 3D 형태의 오가노이드가 아닌 2D 오가노이드 모델이 개발되었으며, 이 모델에서는 TEER 측정이 가능하다[32]. 최근 연구에서는 발프로산과 CHIR99021을 동시에 처리했을 때 장 오가노이드의 표면적이 커지는 것을 보여주었으며, 또 다른 연구에서는 닭의 R-spodin과 Wnt를 사용해 배양했을 때 오가노이드의 배양 기간이 늘어나는 것을 확인했다[33,34].

닭 장 오가노이드의 활용

현재 닭의 장 오가노이드를 배양하는 기술이 크게 발전하였으며, 이것을 활용한 다양한 연구들이 속속 등장하고 있다. 먼저, 가금 산업에서 계란의 품질을 향상시키는 것으로 알려진 프로바이오틱스인 Lactobacillus salivariusL. agilis의 섭취가 장내 미생물 환경을 개선하고, 파네스 세포와 장 상피 줄기세포의 활성을 높이는 것을 오가노이드를 통해 밝혔다[35,36]. 또한 L-말산과 KLF5가 장 상피 줄기세포를 활성화해 장 상피의 재생을 유도한다는 것을 확인했다[37,38]. 더불어, 박테리아인 살모넬라균과 곰팡이 독소인 데옥시니발레놀이 장에 끼치는 영향이 장 오가노이드에서 유사하게 발생한다는 사실을 확인하여, 닭의 장 오가노이드가 숙주-병원체 상호작용의 연구에 적합한 모델임을 입증했다[39,40].

닭 장 오가노이드의 구축이 최근 확립되었으며, 때문에 이를 활용한 연구는 아직 적은 편이다. 하지만 이 분야의 연구 및 기술 발전은 빠르게 향상되고 있으며, 전망이 매우 밝다. 닭 장 오가노이드를 활용한 연구는 장 상피에 대한 이해를 높이고, 이를 통해 닭 산업에 긍정적인 영향을 미칠 것으로 기대된다.

소 장 오가노이드

소는 경제적으로 중요한 가축 종으로, 소의 건강과 생산성을 향상시키기 위해서는 장 상피에 대한 연구가 꼭 필요하다. 이를 위해 불멸화 세포주와 일차 세포 배양법이 구축되었다[4143]. 이들은 숙주-병원체 상호작용, 장 영양분의 흡수 및 조절, 면역반응 등 다양한 장 상피에 대한 연구에 활용되었다[44,45]. 그러나 이러한 배양법은 장 상피의 세포 다양성이 부족하다. 그래서 실제 조직의 환경을 완전히 모방하지 못했고, 이를 대체할 모델이 필요했으며, 이에 따라 소 회장에서 유래한 오가노이드가 개발되었다[46]. 이후 소의 결장에서 유래한 오가노이드 또한 개발되었으며, 어린 소에게서 유래한 오가노이드 또한 개발되었다[47,48]. 냉동보존된 상태인 조직에서 오가노이드를 배양하는 시스템도 성공적으로 개발되었다[49]. 그뿐만 아니라, 소 장 오가노이드의 apical-out 모델과 2D배양 모델까지 구축되는 등 소 장 오가노이드 구축을 위한 많은 연구가 진행되고 있다[47,50].

소 장 오가노이드의 활용

소의 장 오가노이드를 배양하는 기술이 발전함에 따라 이를 활용한 연구들이 진행되었으며, 특히 숙주-병원체 상호작용에 대한 연구가 많이 이루어졌다. 예를 들어 장 오가노이드가 소의 대표적인 바이러스 병원체인 소 코로나바이러스를 연구하는 데 적합한 모델이라는 것을 밝혔다[51]. 바이러스뿐만 아니라 세균 및 기생충의 장 감염을 연구하기 위한 생체 외 모델로도 활용할 수 있다는 것을 증명했다[19,52]. 또한 장 오가노이드를 활용해 장출혈성 대장균이 생성하는 시가 독소가 장 상피에 미치는 영향을 확인했으며, 소 로타바이러스의 세포 침입을 위한 수용체를 알아냈다[53,54]. 최근 연구에서는 장 오가노이드를 통해 염증성 사이토카인인 TNFα, IFNγ, IL-18이 각각 소의 장 장벽에 끼치는 영향을 밝혔다[55].

현재까지 소의 장 오가노이드를 활용한 연구는 제한적이다. 그러나 다양한 연구 결과를 통해 소의 장 오가노이드가 실제 장 환경과 유사하다는 것이 증명됐다. 따라서 장 오가노이드 배양 기술의 전망은 매우 밝으며, 앞으로 더 많은 연구들이 이루어질 것이고, 이를 통해 소의 건강 및 생산성에 큰 영향을 끼칠 것으로 기대된다.

그 외 가축 동물들의 장 오가노이드 개발 및 활용

현재 많은 연구를 통해 장 상피의 생체 외 연구를 위한 모델로서 장 오가노이드의 유용성이 입증되었다. 이에 따라 돼지, 닭, 소 외에 다양한 가축 동물에서 유래한 장 오가노이드가 계속해서 개발되고 있다. 먼저 말의 경우, 공장 및 회장에서 유래한 장 오가노이드 모델이 개발되었다[12,56]. 또한 토끼의 소장과 맹장 오가노이드 모델이 개발되었다[57,58]. 이때 숙주-병원체 상호작용에 대해 평가하기 위해 Rabbit calicivirus Australia-1을 감염시켰으나 바이러스 복제가 일어나지 않았고, 때문에 토끼 장 오가노이드 모델 구축을 위해 더 많은 연구가 필요해 보인다. 또한 양 역시 장 오가노이드 모델 개발에 성공했으며, 숙주-병원체 상호작용을 연구하기에 적합한 모델이라는 것을 보여줬다[59].

결 론

이 논문을 통해 최근 몇 년 동안 이루어진 가축들의 장 오가노이드를 활용한 연구에 대해 논의했다. 가축에서 개발된 장 오가노이드는 실제 장 조직과 유사하게 상피세포의 분포, 기능 및 특성을 보유하고 있고, 이러한 특징을 활용하여 숙주-병원체 상호작용, 영양분 흡수, 면역 반응 등 다양한 연구가 진행되었다. 특히 가축 중에서도 돼지, 닭, 소에 대한 연구가 많이 이루어졌다. 비록 아직 다른 가축들에 대한 연구는 부족하며, 실제 장 환경을 완벽하게 재현하기 위해서는 오가노이드에 대한 추가적인 개발이 필요하다. 하지만 앞으로 가축에 대한 더 많은 연구가 장 오가노이드 모델을 통해 이루어질 것으로 예상되며, 이를 통해 가축 산업이 향상될 것으로 기대된다.

Competing interests

No potential conflict of interest relevant to this article was reported.

Funding sources

Not applicable.

Acknowledgements

Not applicable.

Availability of data and material

Upon reasonable request, the datasets of this study can be available from the corresponding author.

Authors’ contributions

Conceptualization: Lee SI.

Writing - original draft: Lee J.

Writing - review & editing: Lee J, Lee SI.

Ethics approval and consent to participate

This article does not require IRB/IACUC approval because there are no human and animal participants.

REFERENCES

1.

LW PetersonD ArtisIntestinal epithelial cells: regulators of barrier function and immune homeostasisNat Rev Immunol20141414153

2.

H GehartH CleversTales from the crypt: new insights into intestinal stem cellsNat Rev Gastroenterol Hepatol2019161934

3.

HC CleversCL BevinsPaneth cells: maestros of the small intestinal cryptsAnnu Rev Physiol201375289311

4.

H ZhangD LiL LiuL XuM ZhuX Heet al.Cellular composition and differentiation signaling in chicken small intestinal epitheliumAnimals20199870

5.

B van der HeeO MadsenJ VervoortH SmidtJM WellsCongruence of transcription programs in adult stem cell-derived jejunum organoids and original tissue during long-term cultureFront Cell Dev Biol20208375

6.

T SatoRG VriesHJ SnippertM van de WeteringN BarkerDE Stangeet al.Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal nicheNature20094592625

7.

T SatoDE StangeM FerranteRGJ VriesJH van EsS van den Brinket al.Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epitheliumGastroenterology2011141176272

8.

AJ BrosnahanDR BrownPorcine IPEC-J2 intestinal epithelial cells in microbiological investigationsVet Microbiol201215622937

9.

C NossolA Barta-BöszörményiS KahlertW ZuschratterH Faber-ZuschratterN Reinhardtet al.Comparing two intestinal porcine epithelial cell lines (IPECs): morphological differentiation, function and metabolismPLOS ONE201510e0132323

10.

JW YoonSI LeeGene expression profiling after ochratoxin A treatment in small intestinal epithelial cells from pigsJ Anim Sci Technol20226484253

11.

LM GonzalezI WilliamsonJA PiedrahitaAT BlikslagerST MagnessCell lineage identification and stem cell culture in a porcine model for the study of intestinal epithelial regenerationPLOS ONE20138e66465

12.

RH PowellMS BehnkeWRN conditioned media is sufficient for in vitro propagation of intestinal organoids from large farm and small companion animalsBiol Open20176698705

13.

E MussardC LencinaG BoudryCS AchardC KlotzS Combeset al.Culture of piglet intestinal 3D organoids from cryopreserved epithelial crypts and establishment of cell monolayersJ Vis Exp2023e64917

14.

L LiF FuS GuoH WangX HeM Xueet al.Porcine intestinal enteroids: a new model for studying enteric coronavirus porcine epidemic diarrhea virus infection and the host innate responseJ Virol201993e0168218

15.

S ZhangS ZhangY HouY HuangJ CaiG Wanget al.Porcine deltacoronavirus infection disrupts the intestinal mucosal barrier and inhibits intestinal stem cell differentiation to goblet cells via the notch signaling pathwayJ Virol202397e0068923

16.

N YangY ZhangY FuY LiS YangJ Chenet al.Transmissible gastroenteritis virus infection promotes the self-renewal of porcine intestinal stem cells via Wnt/β-catenin pathwayJ Virol202296e0096222

17.

M ZhangL LvH CaiY LiF GaoL Yuet al.Long-term expansion of porcine intestinal organoids serves as an in vitro model for swine enteric Coronavirus infectionFront Microbiol202213865336

18.

SA LeeHJ LeeNY GuYR ParkEJ KimSJ Kanget al.Evaluation of porcine intestinal organoids as an in vitro model for mammalian orthoreovirus 3 infectionJ Vet Sci202324e53

19.

H DerricottL LuuWY FongCS HartleyLJ JohnstonSD Armstronget al.Developing a 3D intestinal epithelium model for livestock speciesCell Tissue Res201937540924

20.

B VermeireLM GonzalezRJ JansensJ, E CoxB DevriendtPorcine small intestinal organoids as a model to explore ETEC–host interactions in the gutVet Res20215294

21.

P HoffmannN SchnepelM LangeheineK KünnemannGA GrasslR Brehmet al.Intestinal organoid-based 2D monolayers mimic physiological and pathophysiological properties of the pig intestinePLOS ONE202116e0256143

22.

XG LiM ZhuMX ChenHB FanHL FuJY Zhouet al.Acute exposure to deoxynivalenol inhibits porcine enteroid activity via suppression of the Wnt/β-catenin pathwayToxicol Lett20193051931

23.

Z WangJ LiY WangL WangY YinL Yinet al.Dietary vitamin A affects growth performance, intestinal development, and functions in weaned piglets by affecting intestinal stem cellsJ Anim Sci202098skaa020

24.

M ZhuY QinC GaoH YanaX Wangl-Glutamate drives porcine intestinal epithelial renewal by increasing stem cell activity via upregulation of the EGFR-ERK-mTORC1 pathwayFood Funct202011271424

25.

RL MedidaAK SharmaY GuoLJ JohnstonPE UrriolaA Gomezet al.Dietary zinc supplemented in organic form affects the expression of inflammatory molecules in swine intestineAnimals2023132519

26.

F GhiselliM FeliciA PivaE GrilliEstablishment and characterization of an SV40 immortalized chicken intestinal epithelial cell linePoult Sci2023102102864

27.

F GhiselliB RossiM FeliciM ParigiG TosiL Fiorentiniet al.Isolation, culture, and characterization of chicken intestinal epithelial cellsBMC Mol Cell Biol20212212

28.

M PierzchalskaM GrabackaM MichalikK ZylaP PierzchalskiProstaglandin E2 supports growth of chicken embryo intestinal organoids in Matrigel matrixBiotechniques20125230715

29.

M PierzchalskaM PanekM CzyrnekM GrabackaThe three-dimensional culture of epithelial organoids derived from embryonic chicken intestineMethods Mol Biol2019157613544

30.

M AcharyaK ArsiAM DonoghueR LiyanageNC RathProduction and characterization of avian crypt-villus enteroids and the effect of chemicalsBMC Vet Res202016179

31.

M PanekM GrabackaM PierzchalskaThe formation of intestinal organoids in a hanging drop cultureCytotechnology201870108595

32.

B OrrK SuttonS ChristianT NashH NiemannL Lind Hansenet al.Novel chicken two-dimensional intestinal model comprising all key epithelial cell types and a mesenchymal sub-layerVet Res202152142

33.

MJ OostA IjazDA van HaarlemK van SummerenFC VelkersAD Kraneveldet al.Chicken-derived RSPO1 and WNT3 contribute to maintaining longevity of chicken intestinal organoid culturesSci Rep20221210563

34.

D ZhaoMB FarnellMH KogutKJ GenoveseRS ChapkinLA Davidsonet al.From crypts to enteroids: establishment and characterization of avian intestinal organoidsPoult Sci2022101101642

35.

Y HongZ ZhouL YuK JiangJ XiaY Miet al.Lactobacillus salivarius and Lactobacillus agilis feeding regulates intestinal stem cells activity by modulating crypt niche in hensAppl Microbiol Biotechnol2021105882335

36.

L LiuZ ZhouY HongK JiangL YuX Xieet al.Transplantion of predominant Lactobacilli from native hens to commercial hens could indirectly regulate their ISC activity by improving intestinal microbiotaMicrob Biotechnol202215123552

37.

L YuS QiG WeiX RaoD LuoM Zouet al.Krüppel-like factor 5 activates chick intestinal stem cell and promotes mucosal repair after impairmentCell Cycle202322214260

38.

Y ZhangF LiZ LuX WangH YanX Wanget al.l-Malic acid facilitates stem cell-driven intestinal epithelial renewal through the amplification of β-catenin signaling by targeting frizzled 7 in chicksJ Agric Food Chem2023711307991

39.

TH KangSI LeeEstablishment of a chicken intestinal organoid culture system to assess deoxynivalenol-induced damage of the intestinal barrier functionJ Anim Sci Biotechnol20241530

40.

S Lacroix-LamandéO BernardiT PezierE BarilleauJ Burlaud-GaillardA Gagneuxet al.Differential Salmonella typhimurium intracellular replication and host cell responses in caecal and ileal organoids derived from chickenVet Res20235463

41.

K KurodaT KiyonoE IsogaiM MasudaM NaritaK Okunoet al.Immortalization of fetal bovine colon epithelial cells by expression of human cyclin D1, mutant cyclin dependent kinase 4, and telomerase reverse transcriptase: an in vitro model for bacterial infectionPLOS ONE201510e0143473

42.

K MiyazawaT HondoT KanayaS TanakaI TakakuraW Itaniet al.Characterization of newly established bovine intestinal epithelial cell lineHistochem Cell Biol201013312534

43.

K ZhanM LinMM LiuYN SuiGQ ZhaoEstablishment of primary bovine intestinal epithelial cell culture and clone methodIn Vitro Cell Dev Biol Anim201753547

44.

J VillenaH AsoVP RuttenMG, H TakahashiW van EdenH KitazawaImmunobiotics for the bovine host: their interaction with intestinal epithelial cells and their effect on antiviral immunityFront Immunol20189326

45.

K ZhanX GongY ChenM JiangT YangG ZhaoShort-chain fatty acids regulate the immune responses via G protein-coupled receptor 41 in bovine rumen epithelial cellsFront Immunol2019102042

46.

CA HamiltonR YoungS JayaramanA SehgalE PaxtonS Thomsonet al.Development of in vitro enteroids derived from bovine small intestinal cryptsVet Res20184954

47.

KW ParkH YangM Gook LeeSA OckH WiP Leeet al.Establishment of intestinal organoids from small intestine of growing cattle (12 months old)J Anim Sci Technol202264110516

48.

E TöpferA PasottiA TelopoulouP ItalianiD BoraschiMA Ewartet al.Bovine colon organoids: from 3D bioprinting to cryopreserved multi-well screening platformsToxicol In Vitro201961104606

49.

K NishiharaKM WoodLL GuanMA SteeleCultivation of enteroids from fresh and cryopreserved bovine duodenal tissuesJDS Commun2023451823

50.

KM SuttonB OrrJ HopeSR JensenL VerveldeEstablishment of bovine 3D enteroid-derived 2D monolayersVet Res20225315

51.

R ShakyaA Jiménez-MeléndezLJ RobertsonM MyrmelBovine enteroids as an in vitro model for infection with bovine CoronavirusViruses202315635

52.

R BlakeK JensenN MabbottJ HopeJ StevensThe development of 3D bovine intestinal organoid derived models to investigate Mycobacterium avium ssp paratuberculosis pathogenesisFront Vet Sci20229921160

53.

MM AlfajaroJY KimL BarbéEH ChoJG ParkM Solimanet al.Dual recognition of sialic acid and αGal epitopes by the VP8* domains of the bovine rotavirus G6P[5] WC3 and of its mono-reassortant G4P[5] RotaTeq vaccine strainsJ Virol201993e0094119

54.

SF FitzgeraldAE BeckettJ Palarea-AlbaladejoS McAteerS ShaabanJ Morganet al.Shiga toxin sub-type 2a increases the efficiency of Escherichia coli O157 transmission between animals and restricts epithelial regeneration in bovine enteroidsPLOS Pathog201915e1008003

55.

CK CrawfordV Lopez CervantesML QuiliciAG ArmiénM QuestaMS Matloobet al.Inflammatory cytokines directly disrupt the bovine intestinal epithelial barrierSci Rep20221214578

56.

A Stieler StewartJM FreundLM GonzalezAdvanced three-dimensional culture of equine intestinal epithelial stem cellsEquine Vet J2018502418

57.

E KardiaM FreseE SmertinaT StriveXL ZengM Esteset al.Culture and differentiation of rabbit intestinal organoids and organoid-derived cell monolayersSci Rep2021115401

58.

E MussardC PouzetV HeliesG PascalS FourreC Cherbuyet al.Culture of rabbit caecum organoids by reconstituting the intestinal stem cell niche in vitro with pharmacological inhibitors or L-WRN conditioned mediumStem Cell Res202048101980

59.

D SmithDR PriceG, A BurrellsMN FaberKA HildersleyC Chintoan-Utaet al.The development of ovine gastric and intestinal organoids for studying ruminant host-pathogen interactionsFront Cell Infect Microbiol202111733811